描述
本方法可用于以血红蛋白为底物的胃蛋白酶活性测定。这是一种分光光度速率终止测定法。
单位定义:一个单位的胃蛋白酶在37°C、pH 2.0 下,以血红蛋白作为底物,溶于三氯乙酸(TCA)的产物每分钟产生 0.001 的 ΔA280 。(最终体积 = 16 mL,光程 = 1 cm。)
所需试剂和设备
1.0 M 盐酸
6.1 N [~100% (w/v)] 三氯乙酸溶液(货号:T0699)
注意事项
请参阅产品化学品安全技术说明书,获取危害和安全操作方法相关信息。
制备说明
使用超纯水(25 °C时≥18 MΩxcm电阻率)制备试剂。
10 mM HCl(盐酸)—— 用超纯水将 1.0 M 盐酸稀释 100 倍。
2.5% (w/v) 血红蛋白原液 – 使用牛血血红蛋白(货号:H2625)用超纯水配制 25 mg/mL 溶液。用力搅拌,形成漩涡,在37°C 下至少持续搅拌 10 分钟,然后用粗过滤器(90-130 mm)通过聚丙烯柱过滤。
底物[2.0% (w/v) 血红蛋白溶液]——将 80 mL 过滤后的 2.5% (w/v) 血红蛋白原液转移到合适的容器中。使用 5 M HCl 在 37°C 下将溶液的 pH调至 2.0。用超纯水将最终体积加至 100 mL。
TCA 溶液[5% (w/v) 三氯乙酸]——用超纯水稀释6.1 N[~100% (w/v)] 三氯乙酸溶液(货号:T0699)20 倍。
酶溶液(胃蛋白酶)– 用冷的 (2-8°C) 10 mM HCl 制备 1 mg/mL 的原液。如果存在不溶物质,将原液置于冰上直至溶解。如果胃蛋白酶已经溶解,或者如果不溶性物质仍然存在,在 1 小时后,将 1 mg/mL 的原液用冷的10 mM HCl 溶液进一步稀释至 0.01–0.05 mg/mL。
操作流程
1.将底物移入合适的玻璃瓶中。
2.将小瓶置于恒温水浴中并平衡至 37°C 约 10 分钟,然后添加:
3.涡旋混合并在 37ºC孵育整整 10 分钟,然后添加:
4.涡旋混合并在 37°C 下再孵育5 分钟。
5.通过 0.45 µm 注射过滤器过滤空白和试样混合物。使用分光光度计,记录每个小瓶中每种过滤溶液相对空气的A280。
单位/ml 酶 = |
|
式中:
df = 稀释因子
10 = 以分钟计的测定孵育时间
1.0 = 添加的酶溶液体积 (ml)
0.001 =每单位胃蛋白酶(单位定义)的ΔA280
参考文献
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